小鼠原代細胞培養(yǎng)是指直接從動物體內(nèi)獲取的細胞、組織和器官，經(jīng)體外培養(yǎng)后，直到傳代為止。這種培養(yǎng)，首先用無菌操作的方法，從動物體內(nèi)取出所需的組織（或器官），經(jīng)消化，分解成單個游離細胞，在人工培養(yǎng)下，使其不斷的生長及繁殖。

 

　　細胞培養(yǎng)是一種操作繁瑣而又要求十分嚴謹?shù)膶嶒灱夹g(shù)。是用無菌的方法將動物體內(nèi)的組織（或器官）取出，模擬動物體內(nèi)的生理條件，在體內(nèi)進行培養(yǎng)，使其不斷生長、繁殖，人們借以觀察細胞生長、繁殖、細胞分化以及細胞衰老等過程的生命現(xiàn)象。要使細胞能在體外長期生長，必須滿足兩個基本要求：一是供給細胞存活所必須的條件，如適量的水、無機鹽、氨基酸、維生素、葡萄糖及其有關(guān)的生長因子、氧氣、適宜的溫度，注意外環(huán)境酸堿度與滲透壓的調(diào)節(jié)。二是嚴格控制無菌條件。

 

　　細胞培養(yǎng)的意義：具有其他生物技術(shù)不可對比的優(yōu)點培養(yǎng)條件易改變和控制便于單因子分析便于人們直接對細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)、細胞生長及發(fā)育等過程的觀察在生物學(xué)的各個領(lǐng)域如分子生物學(xué)、細胞生物學(xué)、遺傳學(xué)、免疫學(xué)、腫瘤學(xué)及病毒學(xué)等已被廣泛應(yīng)用。細胞培養(yǎng)的局限性在脫離機體復(fù)雜環(huán)境下細胞培養(yǎng)條件與軀體環(huán)境有一定距離觀察到的結(jié)果有時難以正確反映機體內(nèi)的狀況細胞培養(yǎng)得到的產(chǎn)物少。

 

　　小鼠原代細胞實驗步驟:

　　1、小鼠麻醉

　　根據(jù)體重計算相應(yīng)的麻醉劑量并腹腔注射（也可以用異氟烷進行空氣麻醉）

　　2、對*麻醉后的小鼠進行解剖，打開腹腔，找到小鼠下腔靜脈及門靜脈，使用滯留針插入下腔靜脈，將50-60ml的緩沖溶液一在10-20min內(nèi)緩慢注射進入小鼠血液循環(huán)內(nèi)，看到小鼠肝臟有明顯腫脹時剪開門靜脈，完成后改用緩沖溶液二進行沖洗。

　　3、沖洗完成后，將小鼠肝臟剪下，轉(zhuǎn)移至DMEM高糖培養(yǎng)基，用DMEM培養(yǎng)基清洗2-3次后，使用滅菌鑷子將肝臟在培養(yǎng)基內(nèi)撕開，使原代肝細胞從肝臟內(nèi)流出。

　　4、將分離得到的肝臟細胞過篩網(wǎng)篩選，過濾組織碎塊及其他雜質(zhì)，并對細胞混懸液離心，按照一定的離心力得到初步的肝細胞沉淀，此時的肝細胞中混雜著肝臟實質(zhì)細胞和非實質(zhì)細胞，需要使用percoll離心液進行梯度離心。

　　5、梯度離心后的細胞即為原代肝臟實質(zhì)細胞，重懸后計數(shù)即可用于后續(xù)的實驗，若對細胞純度存疑，也可以進行流式測定。